Laboratorio de Biotecnología Acuática
Nuestro laboratorio estudia la cuestión fundamental de cómo se regula el desarrollo de los organismos complejos, utilizando como modelos el rodaballo y el pez cebra.
El principal objetivo científico del Laboratorio de Biotecnología Acuática es aplicar enfoques moleculares y celulares al estudio de las fases tempranas del desarrollo de peces y de las enfermedades que les afectan, así como aplicar ciencia básica para mejorar el rendimiento, la eficacia y la sostenibilidad de la acuicultura marina a nivel global.
La investigación de nuestro laboratorio se centra de forma general en comprender el modo en que las células utilizan correctamente la información codificada en el ADN para llevar a cabo las funciones fisiológicas necesarias durante las distintas fases del desarrollo.
La alteración o interrupción de estos mecanismos reguladores es responsable de muchas anomalías en el desarrollo, como las deformidades morfológicas. Pretendemos descubrir cómo funcionan algunos de estos mecanismos, lo que a su vez nos ayudará a comprender la causa de las anomalías asociadas. Utilizamos el pez cebra (Danio rerio) y el rodaballo (Scophthalmus maximus) como modelos de sistema.
- Jesús Marco de Lucas; M. Victoria Moreno-Arribas; Montoliu, Lluís; Rada-Iglesias, Alvaro; Domínguez, María; Huertas Sánchez, Pablo; De Las Rivas, Javier; Rojas, A. M.; Azorín, Ferran; Rotllant, Josep; Gutiérrez Armenta, Crisanto; Hernández-Munaín, Cristina; Barco, Ángel; Gómez, María; Herrero, Antonia; Ramos, Lourdes; Fraga, Mario F.; Ramos, Sonia (2021) White Paper 3: Genome&Epigenetics Consejo Superior de Investigaciones Científicas ISBN:978-84-00-10739-0
- Guerrero-Peña, L.; Suarez-Bregua, P.; Méndez-Martínez, L.; García-Fernández, P.; Tur, R.; Rubiolo, J.A.; Tena, J.J.; Rotllant, J. (2021) Brains in Metamorphosis: Temporal Transcriptome Dynamics in Hatchery-Reared Flatfishes Biology DOI:10.3390/biology10121256
- Azorín F; Rotllant J; Albert Jordán; Ignacio Maeso; Miguel Manzanares; Álvaro Rad; Joaquim Roca; Guillermo Vicent (2021) 3D Genoma Architecture " Genome & epigenetics vol. 3" Consejo Superior de Investigaciones Científicas
- Henriques, D.; Balsa-Canto, E. (2021) The Monod Model Is Insufficient To Explain Biomass Growth in Nitrogen-Limited Yeast Fermentation Applied and Environmental Microbiology DOI:10.1128/AEM.01084-21
- Suarez-Bregua, P.; Pirraco, R.P.; Hernández-Urcera, J.; Reis, R.L.; Rotllant, J. (2021) Impact of dietary phosphorus on turbot bone mineral density and content Aquaculture Nutrition DOI:10.1111/anu.13253
- TFM - Andrielle Larissa Reascos Tatés (26/09/2022) Nuevas herramientas para la monitorización de cetáceos en el norte y noroeste de la Península Ibérica: ADN ambiental y drones UNIVERSIDAD COMPLUTENSE DE MADRID
- TFM - PRIYANKA SONI (15/07/2021) How Fishes Color their Skin: Genetic Analysis of Melanocortin Receptor 2 (MC2R) in Fish Pigmentation UNIVERSIDAD DEL PAIS VASCO (UPV/EHU )
- TFM - Lara Vidal Nogueira (04/09/2020) La arquitectura tridimensional del Genoma. Principios y funciones Univerdidad de Vigo (UVigo)
- TFM - Luis Méndez Martínez (14/07/2020) Caracterización funcional del papel del receptor de melanocortinas Mc2r en la formación del patrón de pigmentación en el pez cebra (Danio rerio) Univerdidad de Vigo (UVigo)
- TFM - Miguel Álvarez González (09/07/2020) Análisis de ADN ambiental (eDNA) y su aplicación para la monitorización de cetáceos en el Atlántico norte Universidade de Vigo (UVIGO)
- Capacidades | Evaluación de stocks pesqueros mediante el uso de enfoques tradicionales y de ecología molecular
Desarrollo de modelos de evaluación de stock para estimar el estado de las poblaciones de peces y los valores de Rendimiento Máximo Sostenible de las pesquerías a partir de datos de presión pesquera y parámetros de dinámica poblacional (abundancia, distribución, edad, fecundidad, etc.) obtenidos mediante métodos tradicionales y técnicas -ómicas, que permiten una resolución espacial mucho mayor
- Capacidades | Desarrollo de pruebas de bioactividad in vivo para biomoléculas mediante el uso de modelos animales
Uso de modelos animales (pez cebra, rodaballo, ratón, etc.) como sistemas modelo para estudiar la bioactividad de diferentes compuestos, así como de enfermedades que afectan a peces y a seres humanos (shock séptico, enfermedades inflamatorias, etc.).
- Capacidades | Ómica avanzada aplicada a organismos marinos
Estudios sobre la estructura del genoma de organismos marinos, incluido el mapeo genético, la secuenciación de ADN, cómo se produce el conjunto completo de tránscritos de ARN por el genoma y cómo se ve afectado por el desarrollo, las enfermedades o los factores ambientales que determinan el fenotipo, especialmente la proteómica y la metabolómica, utilizando siempre las técnicas más avanzadas (ATAC-seq, MethylCap-Seq, RNA-seq, tecnología de ADN recombinante, CRISPR/Cas9 knockin y knockout , enhancer detector (ZED),tecnologías transgénicas Tol2 kit y BAC, etc.).
- Capacidades | Desarrollo de variedades de especies de acuicultura resistentes a patógenos
Aplicación de las más avanzadas técnicas de -ómica para identificar genes de resistencia que pueden usarse como biomarcadores para seleccionar variedades de especies de acuicultura marina que sean resistentes a patógenos.
- Capacidades | Desarrollo de inmunoestimulantes y vacunas para especies de acuicultura
Aplicación de las técnicas de -ómica más avanzadas, junto con técnicas de inmunología, microbiología y bioquímica de proteínas, para desarrollar inmunoestimulantes y vacunas para especies de acuicultura.
